kanały wapniowe typu L

kanały wapniowe bramkowane napięciem są niezbędne do depolaryzacji błony sprzęgającej do napływu wapnia we wszystkich pobudliwych komórkach . Wapń, który przepływa do pobudliwych komórek przez kanały wapniowe bramkowane napięciem, pełni podwójną funkcję, generując zarówno sygnały elektryczne, jak i chemiczne. Wewnątrzkomórkowe zdarzenia kontrolowane przez wapń są zróżnicowane i liczne. Pobudliwe komórki mogą wybierać spośród wielu funkcjonalnie odrębnych podjednostek kanału Ca2+, których działania są precyzyjnie dostrojone do obsługi określonych zadań. Należą do nich pobudzenie-skurcz sprzęgła w mięśniach, pobudzenie-wydzielanie sprzęgła w neuronach, komórkach włosowych i komórkach endokrynologicznych, i regulacji ekspresji genów.1-5 dziesięciu genów koduje główną podjednostkę CaVa1 kompleksu kanału wapniowego ogrodzonego napięciem u ssaków.6 porównania sekwencji genów CaVa1 z kilku genomów ujawniają trzy główne rodziny, CaV1a1, CaV2a 1 i CaV3a 1.

jeszcze przed pojawieniem się selektywnych toksyn, kilku badaczy wykazało, że wiele, funkcjonalnie odrębnych klas kanałów wapniowych bramkowanych napięciem ulega ekspresji w różnych typach komórek, w tym w sercu.8-11 podział ten opierał się na obecności dwóch odrębnych klas kanałów wapniowych, które znacznie różniły się zależnością napięciową aktywacji. Opracowano koncepcję kanałów wapniowych aktywowanych niskim napięciem i aktywowanych wysokim napięciem i chociaż jest to proste, pozostaje to użyteczny i pouczający sposób rozróżniania między różnymi klasami kanałów wapniowych.

niektóre cechy pojawiły się w badaniach kanałów wapniowych bramkowanych napięciem w sercu i neuronach, które ustanowiły zestaw standardowych kryteriów określających obecność określonego podtypu kanału Ca2+. Kanały aktywowane niskonapięciowo, typu T, Ca2+, które zawierają podjednostki CaV3a1 (a1G, a1H, A1i) aktywują się szybko, dezaktywują powoli, wykazują wyraźną inaktywację zależną od napięcia i są niewrażliwe na dihydropirydyny i kilka innych toksyn, które hamują neuronalne kanały wapniowe. W badaniach tkanki serca kanały aktywowane wysokim napięciem stały się synonimem kanałów zawierających CaV1a1 typu L (A1c, A1D), które aktywują się wolniej, ale dezaktywują szybciej niż kanały typu T. Wykazują słabą inaktywację zależną od napięcia, ale silną inaktywację zależną od wapnia i są wrażliwe na dihydropirydyny.6,12 w neuronach aktywowane wysokim napięciem kanały Ca2+ są dalej dzielone na wrażliwe na dihydropirydynę, typu L i niewrażliwe na dihydropirydynę, typu P / Q -, N-i typu R, które zawierają podjednostki CaV2a1 (A1A, a1B, A1E).6,12,13

przy niskich progach aktywacji i wyraźnej inaktywacji zależnej od napięcia, kanały Ca2+ typu T są zoptymalizowane pod kątem przyczyniania się do prądów depolaryzacyjnych podczas fazy depolaryzacji powolnego rozkurczu, która wspomaga rozruch serca w węźle zatokowo-przedsionkowym (SA).8,9,14,15 obecność genów CaV3a1 w tkance węzłowej serca wspiera ten pogląd.Z drugiej strony, 16 kanałów Ca2+ typu L do niedawna było zaangażowanych w późniejsze fazy rozkurczowej depolaryzacji, ponieważ potencjał błonowy depolaryzuje się poza około -30 mV. Ich zależność od silniejszej depolaryzacji w celu aktywacji jest zgodna z poglądem, że kanały Ca2+ typu L nie przyczyniają się do inicjacji potencjału czynnościowego. Jednak ostatnie badania myszy knockout CaV1. 3α1, w tym te Chiamvimonvat i współpracowników zgłoszone w tym wydaniu badań cyrkulacji, oferują przekonujące dowody potwierdzające rolę kanałów Ca2+ typu L w inicjacji potencjału czynnościowego w węźle SA.17,18 w obu badaniach myszy pozbawione genu CaV1.3α1 typu L wykazują istotną dysfunkcję węzła SA charakteryzującą się bradykardią zatokową. Inni badacze zgłaszają również całkowity ubytek słuchu, zgodny z wyraźną ekspresją CaV1. 3α1 w wewnętrznych komórkach włosowych ślimaka.18,19

te ustalenia są wyraźnie paradoksalne dla klasycznych opisów kanałów Ca2+ typu L jako aktywowanych wysokim napięciem. Wyjaśnienie jest stosunkowo proste. Kanały Ca2 + typu CaV1. 3α1 typu L nie są aktywowane wysokim napięciem. Dowody potwierdzające ten wniosek przedstawiono zarówno w badaniach Striessnig, jak i Chiamvimonvat, porównując właściwości natywnych prądów u myszy knockout typu dzikiego i cav1.3α1.17,18 inne badania charakteryzujące właściwości funkcjonalne niedawno sklonowanych podjednostek CaV1. 3α1 wyizolowanych z neuronów i komórek endokrynologicznych zapewniają dodatkowe wsparcie.18,20-22

striessnig i współpracownicy zarejestrowali z wewnętrznych komórek włosowych ślimaka myszy CaV1. 3α1 – / – i wykazali selektywną utratę niskiego progu aktywującego prąd Ca2+. Z tego wywnioskowali obecność podobnego prądu w komórkach węzłów SA, aby wyjaśnić obserwowane nieprawidłowości w rozruszniku serca u tych samych myszy.18 Chiamvimonvat i współpracownicy teraz przetestować tę hipotezę bezpośrednio rejestrując z węzła SA i izolowanych komórek dzikiego typu i CaV1. 3α1 – / – myszy.17 Jak donoszono w tym wydaniu badań cyrkulacyjnych, brak CaV1. 3α1 jest związany ze zmniejszoną szybkością wypalania węzłów SA, spowolnieniem szybkości depolaryzacji rozkurczowej przy stosunkowo hiperpolaryzowanych napięciach (-40 i -45 mV) oraz utratą prądu wapnia w izolowanych komórkach węzłów SA, które aktywują się przy stosunkowo hiperpolaryzowanych potencjałach błonowych.17 te nowe badania oferują silne wsparcie, że CaV1.Ablacja 3α1, dysfunkcja węzła SA i utrata niskiego progu aktywującego prąd Ca2+ w komórkach węzła SA są ściśle powiązane.

czy wszystkie kanały typu L Ca2+ zawierające podjednostkę CaV1.3α1 aktywują się przy napięciach hiperpolaryzowanych? Odpowiedź brzmi prawdopodobnie tak, na podstawie ostatnich analiz funkcjonalnych rekombinowanych kanałów CaV1. 3α1.20-22 rysunek porównuje szczytowe relacje napięciowe kanałów typu CaV1.3α1 L z kanałami typu CaV1.2α1 l aktywowanymi wysokim napięciem i z kanałami typu T aktywowanymi niskim napięciem CaV3.1α1. Duża różnica w zależności napięcia aktywacji między dwoma kanałami Ca2 + typu L jest tak uderzająca, jak podobieństwo progów aktywacji kanałów typu L CaV1. 3α1 i kanałów typu T CaV3. 1α1.20,23 podczas gdy na właściwości kanałów wapniowych wpływa kilka czynników, w tym związek ze specyficznymi podjednostkami pomocniczymi, podobne cechy podjednostek CaV1.3α1 sklonowanych z różnych tkanek,20-22 w połączeniu z dwoma badaniami ablacji genów u myszy,17,18 przemawiają za wnioskiem, że aktywacja zależna od niskiego napięcia jest nieodłączną cechą CaV1.Kanały Ca2+ zawierające 3α1. Wyraźnie istnieją znaczące różnice funkcjonalne pomiędzy genami Cav1a1 typu L.

kanały typu L CaV1.3α1 aktywują się przy ujemnych potencjałach membranowych podobnych do kanałów typu T CaV3a1. Porównuje się znormalizowane, szczytowe relacje prąd-napięcie dla typu L CaV1.3α1, typu T CaV3.1α1 i typu L CaV1.2α1. Punkty środkowe aktywacji (V1/2) wynoszą około -30 mV Dla typu L CaV1.3α1 i typu T CaV3.1α1 oraz -5 mV dla typu L CaV1.2α1. Krzywe były generowane przez funkcję Boltzmanna-GHK z wykorzystaniem parametrów uzyskanych z kanałów rekombinowanych wyrażonych w oocytach Xenopus zarejestrowanych w podobnych warunkach (10 mmol/L zewnątrzkomórkowego barium20,23).

jeśli kanały L zawierające CaV1. 3α1 aktywują się w hiperpolaryzowanych potencjałach membranowych, jest raczej zaskakujące, że ta cecha nie została podkreślona we wcześniejszych badaniach sklonowanych i heterologicznie wyrażonych kanałów. Chociaż inne czynniki prawie na pewno wpływają na właściwości kanału, stężenie zewnątrzkomórkowych kationów dwuwartościowych ma duży wpływ na zależność napięciową aktywacji w wyniku przesiewania ładunku i jest czynnikiem znacznie różniącym się w badaniach. Z nieznanych powodów osiągnięcie wysokich poziomów ekspresji z klonów CaV1. 3α1 do niedawna było problematyczne. W celu skompensowania niskiej gęstości prądu zastosowano stężenia zewnątrzkomórkowego wapnia i baru do 40 mmol/l.17,24 jak sugerują Zhang i wsp., 17 prawdopodobnie przyczynia się to do rozbieżności między właściwościami rekombinowanych kanałów CaV1.3α1 a zakresem aktywacji oczekiwanym z funkcjonalnych analiz natywnych prądów w komórkach węzłów SA. Zastosowanie wysokich stężeń zewnątrzkomórkowych kationów dwuwartościowych we wcześniejszych badaniach sklonowanych kanałów prawdopodobnie przesłoniło niezwykle hiperpolaryzowany zakres aktywacji kanałów Cav1. 3α1 L. Warto zauważyć, że Cav1.3α1 zależność prąd-napięcie typu L jest przesunięta w kierunku napięć ≈20 mV bardziej zdepolaryzowanych i w zakres kanału typu L aktywowanego wysokim napięciem, gdy stosuje się 40 mmol/L baru.20

potrzebne będą przyszłe badania w celu zajęcia się względnym znaczeniem kanałów Ca2 + typu L zawierających CaV1.3α1 w stymulowaniu serca. Chociaż mRNA CaV1. 3α1 występuje w miocytach przedsionkowych, 25 ostatnich badań sugeruje, że poziomy są bardzo niskie w węźle SA, szczególnie w porównaniu z mRNA typu T CaV3.1α1.Dostępność selektywnego inhibitora CaV1.Kanały l zawierające 3α1 okazałyby się użytecznym narzędziem do określenia względnego udziału tego kanału w funkcji węzła SA. Klasyczne blokery kanałów Ca2 + typu L nie są w tym względzie użyteczne. Ostatnie badania rekombinowanych kanałów typu CaV1. 3α1 l sugerują stosunkowo niską wrażliwość na blokowanie przez dihydropirydyny w porównaniu z kanałami typu CaV1.2α1 L.20,21 interesujące będzie ustalenie, czy unikalna izoforma splotu CaV1. 3α1 jest wyrażona w węźle SA. Istnieją dowody na pewien poziom specyficznego dla przedsionków splicingu CaV1.3α1 RNA w łączniku S3–S4 domeny IV kanału.Splicing w tym miejscu przesuwa zależność napięcia aktywacji o <10 mV i wydaje się, że nie wpływa na Wiązanie dihydropirydyny.20 Wreszcie, biorąc pod uwagę nacisk położony na podobieństwa między kanałami Ca2 + typu CaV1. 3α1 i Ca2+ typu T pod względem progów ich aktywacji, warto zwrócić uwagę na cechy, które wyróżniają te kanały. Podczas gdy kanały Ca2+ typu T ulegają wyraźnej inaktywacji zależnej od napięcia, kanały Ca2+ typu CaV1.3α1 wykazują słabą inaktywację zależną od napięcia, ale silną zależną od wapnia. Co więcej, kanały Ca2+ typu CaV1.3α1 l dezaktywują się szybko w porównaniu z podtypami kanałów Ca2+ typu T, które dominują w sercu.

opinie wyrażone w tej redakcji niekoniecznie są opiniami redaktorów lub American Heart Association.

Przypisy

korespondencja z Diane Lipscombe, Box G-1953, Brown University, Providence, RI 02912. E-mail
  • 1 Beam KG, Tanabe T, Numa S. struktura, funkcja i regulacja receptora dihydropirydyny mięśni szkieletowych. Ann N Y Acad Sci. 1989; 560: 127–137.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 2 Ashcroft FM, Proks P, Smith PA, Ammala C, Bokvist K, Rorsman P. Stimulus-secretion coupling in pancreatic beta cells. J Cell Biochem. 1994; 55: 54–65.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 3 Fuchs PA. Synaptic transmission at vertebrate hair cells. Curr Opin Neurobiol. 1996; 6: 514–519.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 4 Finkbeiner S, Greenberg ME. Ca2+ channel-regulated neuronal gene expression. J Neurobiol. 1998; 37: 171–189.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 5 Dunlap K, Luebke JI, Turner TJ. Egzocytatyczne kanały Ca2+ w ośrodkowych neuronach ssaków. Trendy Neurosci. 1995; 18: 89–98.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 6 Ertel EA, Campbell KP, Harpold MM, Hofmann F, Mori Y, Perez-Reyes E, Schwartz a, Snutch TP, Tanabe T, Birnbaumer L, Tsien RW, Catterall WA. Nazewnictwo napięciowych kanałów wapniowych. Neuron. 2000; 25: 533–535.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 7 usunięty w dowód.Google Scholar
  • 80%. Dwa rodzaje kanałów wapniowych w komórkach przedsionkowych psów: różnice w kinetyce, selektywności i farmakologii. J Gen Physiol. 1985; 86: 1–30.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 9 Nilius B, Hess P, Lansman JB, Tsien RW. Nowy typ kanału wapniowego serca w komórkach komorowych. Natura. 1985; 316: 443–446.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 10 Llinas R, Yarom Y. Electrophysiology of mammalian inferior olivary neurones in vitro: different types of voltage-dependent Ionic conductances. J Physiol. 1981; 315: 549–567.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 11 Hagiwara S, Ozawa S, Sand O. Voltage clamp analysis of two inward current mechanism in the egg cell membrane of a starfish. J Gen Physiol. 1975; 65: 617–644.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 12 Hille B. kanały jonowe pobudliwych błon. 3. ed. Sunderland, Mass: Sinauer Associates; 2001.Google Scholar
  • 13 Zhang JF, Randall AD, Ellinor PT, Horne WA, Sather WA, Tanabe T, Schwarz TL, Tsien RW. Charakterystyczna farmakologia i kinetyka sklonowanych neuronalnych kanałów Ca2+ i ich możliwych odpowiedników w neuronach OUN ssaków. Neurofarmakologia. 1993; 32: 1075–1088.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 14 difrancesco D. mechanizmy rozrusznika serca w tkance serca. Annu Rev Physiol. 1993; 55: 455–471.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 15 Irisawa H, Brown HF, Giles W. Cardiac pacemaking in the sinoatrial node. Physiol Rev. 1993; 73: 197–227.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 16 Bohn G, Moosmang S, Conrad H, Ludwig A, Hofmann F, Klugbauer N. Expression of T- and L-type calcium channel mRNA in murine sinoatrial node. FEBS Lett. 2000; 481: 73–76.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 17 Zhang Z, Xu Y, Song H, Rodriguez J, Tuteja D, Namkung Y, Shin H-S, Chiamvimonvat N. Functional roles of Cav1.3 (α1D) calcium channel in sinoatrial nodes: wgląd uzyskany przy użyciu ukierunkowanych na geny mutantów null. Circ Res. 2002; 90: 981-987.LinkGoogle Scholar
  • 18 Platzer J, Engel J, Schrott-Fischer a, Stephan K, Bova s, Chen H, Zheng H, Striessnig J. wrodzona głuchota i dysfunkcja węzła zatokowo-przedsionkowego u myszy pozbawionych kanałów Ca2+ Klasy D typu L. Cell. 2000; 102: 89–97.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 19 Kollmar R, Montgomery LG, Fak J, Henry LJ, Hudspeth AJ. Przewaga podjednostki A1D w kanałach Ca2+ typu L zamkniętych napięciowo w komórkach włosowych w ślimaku kurczaka. Proc Natl Acad Sci U S A. 1997; 94: 14883-14888.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 20 Xu w, Lipscombe D. Neuronal CaV1.3α1 kanały typu L aktywują się przy stosunkowo hiperpolaryzowanych potencjałach błonowych i są niekompletnie hamowane przez dihydropirydyny. J Neurosci. 2001; 21: 5944–5951.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 21 Koschak a, Reimer D, Huber I, Grabner m, Glossmann H, Engel J, Striessnig J. podjednostki A1D (Cav1.3) mogą tworzyć kanały typu L Ca2+ aktywujące się przy napięciu ujemnym. J Biol Chem. 2001; 276: 22100–22106.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 22 Safa P, Boulter J, Hales TG. Właściwości funkcjonalne Cav1.3 (A1D) warianty splotu kanału Ca2+ typu L wyrażone przez mózg szczura i neuroendokrynne komórki GH3. J Biol Chem. 2001; 276: 38727–38737.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 23 Lee JH, Daud AN, Cribbs LL, Lacerda AE, Pereverzev a, Klockner U, Schneider T, Perez-Reyes E. Cloning and expression of a novel member of the low voltage-activated t-type calcium channel family. J Neurosci. 1999; 19: 1912–1921.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 24 Williams ME, Feldman DH, McCue Af, Brenner R, Velicelebi G, Ellis SB, Harpold mm. Struktura i ekspresja funkcjonalna podjednostek α1, α2 i β nowego podtypu kanału wapniowego ludzkiego neuronu. Neuron. 1992; 8: 71–84.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 25 Takimoto K, Li D, Nerbonne JM, Levitan ES. Dystrybucja, splicing i indukowana glikokortykosteroidami ekspresja sercowych A1C i a1D mRNA kanałów Ca2+ z bramkami napięciowymi. J Mol Cell Cardiol. 1997; 29: 3035–3042.CrossrefMedlineGoogle Scholar

Dodaj komentarz

Twój adres e-mail nie zostanie opublikowany.